|
| |
| 本品于 GMP 標準下生產(chǎn) | |
|
|
|
人全血單個核細胞分離液說明書
【包裝規(guī)格】
200ml/瓶
【實驗前準備】
A. 適用儀器
zui大離心力可達 1200g 的水平轉(zhuǎn)子離心機
B. 耗材
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品貨號 | 產(chǎn)地 |
|
|
|
15ml 離心管散裝 | 339650 | 美國 NUNC |
|
|
|
15ml 離心管架裝 | 339651 | 美國 NUNC |
|
|
|
50ml 離心管散裝 | 339652 | 美國 NUNC |
|
|
|
50ml 離心管架裝 | 339653 | 美國 NUNC |
|
|
|
無菌膠頭滴管或塑料滴管 |
|
|
|
|
|
【檢驗方法】 全過程樣本、試劑及實驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進行。 首先根據(jù)樣本量大小,分以下幾種情況:
一、 使用 15ml 離心管時:
情況 A:血液樣本量小于 3ml 時,實驗方法如下:
1. 取一支 15ml 離心管,加入 3ml 分離液。
2. 用吸管小心吸取血液樣本加于分離液之液面上,400-650g,離心 20-30min(注:根據(jù)血 液樣本量確定離心條件,血液樣本量越多,離心力越大,離心時間越長,具體離心條件 需客戶自行摸索,以達到*分離效果)。
3. 離心后,此時離心管中由上至下分為四層。*層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色單個 核細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
4. 用吸管小心吸取第二層環(huán)狀乳白色單個核細胞層到另一 15ml 離心管中,向所得離心管 中加入 10ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118),混勻細胞。
5. 250g,離心 10min。
6. 棄上清。
7. 用吸管以 5ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118)重懸所得細胞。
|
| |
| 本品只能用于科學研究,不能用于臨床檢測 | |
| 本品于 GMP 標準下生產(chǎn) | |
|
|
|
8. 250g,離心 10min。
9. 重復(fù) 6、7、8,棄上清后以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。 情況 B:血液樣本量為 3-6ml 時,實驗方法如下:
1. 取一支 15ml 離心管,先加入與血液樣本等量的分離液。
2. 用吸管小心吸取血液樣本加于分離液之液面上,400-650g,離心 20-30min(注:根據(jù)血 液樣本量確定離心條件,血液樣本量越多,離心力越大,離心時間越長,具體離心條件 需客戶自行摸索,以達到*分離效果,但zui大離心力不超過 1000g)。
3. 離心后,此時離心管中由上至下分為四層。*層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色單個 核細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
4. 用吸管小心吸取第二層環(huán)狀乳白色單個核細胞層到另一 15ml 離心管中,向所得離心管 中加入 10ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118),混勻細胞。
5. 250g,離心 10min。
6. 棄上清。
7. 用吸管以 5ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118)重懸所得細胞。
8. 250g,離心 10min。
9. 重復(fù) 6、7、8,棄上清后以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。
二、 使用 50ml 離心管時:
情況 A:血液樣本量為 6-10ml 時,實驗方法如下:
1. 取一支 50ml 離心管,先加入與血液樣本等量的分離液。
2. 用吸管小心吸取血液樣本加于分離液之液面上,500-950g,離心 20-30min(注:根據(jù)血 液樣本量確定離心條件,血液樣本量越多,離心力越大,離心時間越長,具體離心條件 需客戶自行摸索,以達到*分離效果,但zui大離心力不超過 1200g)。
3. 離心后,此時離心管中由上至下分為四層。*層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色單個 核細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
4. 用吸管小心吸取第二層環(huán)狀乳白色單個核細胞層到另一 15ml 離心管中,向所得離心管 中加入 10ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118),混勻細胞。
5. 250g,離心 10min。
6. 棄上清。
7. 用吸管以 5ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118)重懸所得細胞。
|
| |
| 本品只能用于科學研究,不能用于臨床檢測 | |
| 本品于 GMP 標準下生產(chǎn) | |
|
|
|
8. 250g,離心 10min。
9. 重復(fù) 6、7、8,棄上清后以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。 情況 B:血液樣本量為 10-20ml 時,實驗方法如下:
1. 取一支 50ml 離心管,先加入與血液樣本等量的分離液。
2. 用吸管小心吸取血液樣本加于分離液之液面上,650-110g,離心 20-30min(注:根據(jù)血 液樣本量確定離心條件,血液樣本量越多,離心力越大,離心時間越長,具體離心條件 需客戶自行摸索,以達到*分離效果,但zui大離心力不超過 1200g)。
3. 離心后,此時離心管中由上至下分為四層。*層為血漿層。第二層為環(huán)狀乳白色單個 核細胞層。第三層為透明分離液層。第四層為紅細胞層。
4. 用吸管小心吸取第二層環(huán)狀乳白色單個核細胞層到另一 15ml 離心管中,向所得離心管 中加入 10ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118),混勻細胞。
5. 250g,離心 10min。
6. 棄上清。
7. 用吸管以 5ml 清洗液(產(chǎn)品編號:2010X1118)重懸所得細胞。
8. 250g,離心 10min。
9. 重復(fù) 6、7、8,棄上清后以 0.5ml 后續(xù)實驗所需相應(yīng)液體重懸細胞。
【注意事項】
1. 全過程樣本、試劑及實驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進行。為獲得*的實驗結(jié)果, 在取血 2h 內(nèi)進行實驗,血液存放時間越長,細胞分離效果越差。血液放置超過 6h 后分離效果更差甚至不能達到分離目的。
2. 本實驗不要使用高聚合材質(zhì)(如聚苯乙烯)的塑料制品,應(yīng)使用無靜電、低靜電離 心管及未經(jīng)堿處理過后的玻璃制品,因為靜電作用將導(dǎo)致細胞貼壁、堿處理的玻璃表面 會變成毛面,影響細胞分離效果。
3. 吸取過多的單個核細胞層及分離液層會導(dǎo)致分離液交界處的粒細胞被吸出從而使混雜的
粒細胞數(shù)量增加。
4. 吸取過多的單個核細胞層上層溶液會導(dǎo)致血漿蛋白及血小板混雜。
5. 如所實驗后細胞得率或活性過低,請以尋求幫助,具體 詳見下方生產(chǎn)企業(yè)信息。
6. 當血液樣本粘度過高需稀釋時,*稀釋方法:將血液與樣本稀釋液(產(chǎn)品編號:
2010C1119)1:1 稀釋混勻備用。注:不當?shù)南♂尫椒〞档图毎寐始盎钚?。如血液?/span>
|
|
| 本品只能用于科學研究,不能用于臨床檢測 |
| 本品于 GMP 標準下生產(chǎn) |
本經(jīng)過稀釋則分離過程中需適當降低離心力和離心時間。
【儲存條件及有效期】
18-25℃保存,有效期 2 年。本品易感染細菌,需無菌條件操作。無菌條件下操作,啟 封后置常溫保存。如 4℃保存,本分離液易出現(xiàn)白色結(jié)晶,影響分離效果。 【參考值(參考范圍)】
本實驗淋巴細胞提取率及純度均大于 80%。
下表為成年人外周血中各種細胞的數(shù)量及比例,用戶可適當進行參考。
| 紅細胞 |
| 白細胞 |
| 血小板 |
|
|
|
|
|
|
|
| (4.0-10.0)×109 |
| ||
| (4.0-5.5)×1012 |
|
|
| (1.0-3.0)×1011 |
含量(個/L) | 中性粒細胞 | 淋巴細胞 | 單核細胞 | ||
|
|
|
|
|
|
|
| 50%-70% | 20%-40% | 3%-8% |
|
|
|
|
|
|
|
【相關(guān)實驗技術(shù)方案】 |
|
|
|
|
1. 所獲得淋巴細胞的培養(yǎng)技術(shù)。
2. 所獲得淋巴細胞的核酸提取技術(shù)。
3. 所獲得淋巴細胞的鑒定方法 A.流式細胞技術(shù) B.免疫組化技術(shù)
C.原位雜交技術(shù)
D.PCR 技術(shù) 注:上述技術(shù)方案詳情請登陸本搜索“細胞
分離、純化、擴增及鑒定指導(dǎo)手冊”,并在說明書項目欄下下載使用。 【可能存在的問題及解決方法】
1. 由于血液粘度、細胞密度等差異可能造成的問題及解決方案如下表所示:
出現(xiàn)情況 | 出現(xiàn)原因 | 建議解決方案 |
|
|
|
|
|
離心后目的細胞存在于血漿層或稀釋液層 | 轉(zhuǎn)速過小或離心時間過短 | 適當增減轉(zhuǎn)速 |
|
|
|
| |
離心后目的細胞存在于分離液中 | 轉(zhuǎn)速過大或離心時間過長 |
| |
|
| ||
|
|
|
|
離心后白環(huán)層彌散 | 細胞密度過大 | 調(diào)整細胞密度 |
|
|
|
| |
離心后白環(huán)層太淺或看不見 | 細胞密度過小 |
| |
|
| ||
|
|
|
|
2. 本分離液分離細胞的原理為密度梯度離心,其密度與溫度、大氣壓等密切相關(guān)。不同地
|
|
| 本品只能用于科學研究,不能用于臨床檢測 |
| 本品于 GMP 標準下生產(chǎn) |
區(qū)客戶可根據(jù)當?shù)厍闆r對離心條件進行適當調(diào)整。建議對離心條件進行調(diào)整時,恒定離
心時間,對離心轉(zhuǎn)速進行調(diào)整。
3. 本分離液依照標準,全部使用藥用級原料,性能指標與國產(chǎn)同類產(chǎn)品略有不同,可
能出現(xiàn)紅細胞沉降不*的情況,可以適當加大離心轉(zhuǎn)速。
注:在對離心條件進行調(diào)整時,離心轉(zhuǎn)速的加減以 50-100g 為基數(shù),直至達到*分離效 果,離心力zui小不得小于 400g,zui大不得大于 1200g。離心時間以 20-30min 為準。